Sylabus przedmiotu

Student powinien posiadać podstawowe wiadomości z biochemii i genetyki.

• ćwiczenia laboratoryjne
• dyskusja dydaktyczna
• konsultacje
• objaśnienie lub wyjaśnienie

Zapoznanie z pracownią biologii molekularnej - zasady BHP, obsługa aparatury naukowej, obliczenia chemiczne

Izolacja jąder komórkowych i histonów

Analiza składu białkowego chromatyny

DNA chromatyny nukleazą ze Staphylococcus aureus

Elektroforetyczna analiza DNA po trawieniu nukleazą ze Staphylococcus aureus

Otrzymywanie rybosomów i frakcji cytoplazmatyczej drożdży S. cerevisiae
Izolacja kwaśnych białek rybosomowych z drożdży
Analiza elektroforetyczna białek rybosomowych

Izolacja kinaz białkowych z drożdży S. cerevisiae
Aktywacja i specyficzność substratowa kinazy zależnej od cAMP

Lokalizacja i regulacja aktywności kinazy białkowej CK2
Badanie aktywności enzymatycznej w żelu poliakrylamidowym na przykładzie inwertazy

• ćwiczenia praktyczne/laboratoryjne
• końcowe zaliczenie pisemne
• obecność na zajęciach
• ocena ciągła (bieżące przygotowanie do zajęć i aktywność)

Warunkiem zaliczenia jest aktywne uczestnictwo w zajęciach i uzyskanie 60% punktów z zaliczenia pisemnego.

1. Alberts B. i inni, Podstawy biologii komórki, PWN, Warszawa, 2005
2. Berg J.M., Tymoczko J.L., Stryer L., Biochemia, PWN, Warszawa, 2005
3. Brown T.A., Genomy, PWN, Warszawa, 2009
4. Kłyszejko-Stefanowicz L., Cytobiochemia, PWN, Warszawa, 2002
5. Sambrook J., Russell D.W., Molecular Cloning, Cold Spring Harbor
   Laboratory Press, 2001
6. Tuner P.C. i inni, Krótkie wykłady. Biologia molekularna, PWN, Warszawa, 2007
7. Prace oryginalne i artykuły przeglądowe wskazane przez prowadzącego ćwiczenia

Zajęcia odbywają się w sali ćwiczeń Zakładu Biologii Molekularnej nr 19A. Każdy student obowiązany jest posiadać fartuch bawełniany z długimi rękawami i rękawiczki lateksowe lub winylowe.